1 范圍
本標準規定了牛胚胎移植的主要技術。包括供體牛選擇、超排處理、人工授精、胚胎收集、受體牛準備、移植、妊娠診斷等。
本標準適用于通遼地區養牛場（戶）。
2 規范性引用文件
下列文件對于本文件的應用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，僅所注日期的版本適用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改單）適用于本文件。
NY/T 815 肉牛飼養標準
DB1505/T 065 科爾沁肉牛獸醫防疫準則
DB1505/T 067 牛冷凍精液人工授精技術規范
DB1505/T 074 牛妊娠診斷規程
3 術語和定義
下列術語和定義適用于本標準。
3.1 供體
提供胚胎的母牛。
3.2 受體
接受胚胎并代之完成妊娠、分娩、哺乳犢牛的母牛。
3.3 同期發情
同期發情又稱同步發情，就是利用某些激素制劑人為地控制并調整一群母畜發情周期的進程，使之在預定時間內集中發情。
3.4 超數排卵
在母牛發情周期的適當時期，注射促性腺激素，使卵巢上比自然生理狀態下有更多的卵泡發育并排卵的方法簡稱“超排”。
3.5 沖胚
利用沖卵液將胚胎沖出，并收集在器皿中。
3.6 檢胚
指對沖出的胚胎的完整性、活力進行形態學檢測并鑒定等級。
4 供體牛的選擇標準
4.1 譜系清楚，生產性能優良，種用價值高。
4.2 繁殖性能良好，有連續2個或2個以上正常發情周期。
4.3 營養狀況好，膘情中上等。
4.4 無生殖系統疾病和傳染性疾病。
4.5 與配種公牛必須是經過后裔測定的優秀個體，育種值排名靠前。
5 受體牛的準備
5.1 受體牛選擇
可選擇生長發育正常、健康無病、乳房發育良好、繁殖力較強、體格適中的母牛，最好是經產母牛。
5.2 組群
5.2.1 外購受體牛應來自非疫區，并經獸醫部門檢疫合格的健康空懷母牛。
5.2.2 外購母牛隔離、免疫、驅蟲執行DB1505/T 065。
5.2.3 受體牛佩戴耳標。
5.3 受體牛的飼養管理
5.3.1 受體牛的飼養標準參照NY/T 815。
5.3.2 詳細觀察受體牛的日常行為、發情狀況、健康狀態。
5.4 受體牛的同期發情
5.4.1 受體牛的發情時間與供體牛超排后的發情時間應確保一致，前后不超過1d。
5.4.2 同期發情方法
前列腺素（PGF2α）法：一次注射法是在發情周期的第9d注射PGF2α，通常在2d～3d內發情。在不清楚發情周期的情況下采用兩次注射法，即第一次注射后間隔10d～12d再進行第二次注射。約90%于注射后24h～48h發情。
孕激素法：每日肌注或口服孕酮類似物如氯前列烯醇（PGC）2ml或0.2mg。處理12d～18d，停藥2d～3d后出現發情。
5.4.3 受體牛發情鑒定方法與供體牛相同。
6 供體牛的超排處理
6.1 通常采用促卵泡素（FSH）+前列腺素（PG）法。
6.2 程序
供體牛發情后的第9d～13d 肌注FSH，以日遞減法連續注射4d，每天早晚等量注射2次（每隔12h），使用總劑量按照牛的體重、胎次作適當調整。詳見表1。
表1 發情9d～13d超排處理及藥物劑量表
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激 素 |
產 地 |
起始注射量（mg） |
連續注射4d每日遞減（mg） |
|
|
經產牛 |
育成牛 |
|||
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FSH |
國產 |
8～10 |
6～8 |
0.2～0.4 |
|
進口 |
300～400 |
200～300 |
20 |
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表1（續）
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PG 氯前列烯醇 |
肌注 |
注射FSH 5～6針后 |
0.4～0.6 |
|
子宮灌注 |
注射FSH 5～6針后 |
0.2～0.3 |
超排藥品的劑量和比例應根據不同廠家和批號作調整。
7 供體牛的人工授精
7.1 發情鑒定
供體牛超排處理后，一般12h～48h出現發情征兆。發情鑒定執行DB1505/T 067。
7.2 配種
執行DB1505/T 067。
8 胚胎收集
8.1 方法
采用非手術法。
8.2 準備
8.2.1 回收胚胎在配種后6d～8d進行。沖胚前一天開始停飼并限制飲水，以減輕沖胚操作時腹壓和瘤胃壓力的影響。
8.2.2 準備好沖胚器械和沖卵液。沖卵液使用杜氏磷酸鹽緩沖液（D-PBSS）,其成分和配方見附錄A。
8.3 供體牛的保定與消毒。
保定供體牛，用2%鹽酸利多卡因或普魯卡因進行薦尾椎硬膜外麻醉，用18號針頭，每頭牛約5ml。應將外陰部及陰唇清洗消毒，再用消毒過的紙巾擦干。
8.4 胚胎回收
8.4.1 固定沖卵器
供體牛尾部麻醉后，操作者一只手伸入直腸握住子宮頸，另一只手持內管穿插有金屬探針的雙通式或三通式導管沖卵器，使其依次通過陰門、陰道、子宮頸和子宮體，最后頭部抵達一側子宮角的基部。然后通過充氣孔充氣15ml～20ml，使其頭部的氣囊膨脹以固定在子宮角內腔的基部，以免沖卵液流入子宮體并沿子宮頸流出。
8.4.2 注入沖卵液
將D-PBSS 沖卵液吊瓶掛在距母牛外陰上方0.8m～1m高處，接三通管和沖卵管，用進流開關和出流開關控制流量，每次灌注30ml～50ml D-PBSS沖卵液，單側總量為300ml～500ml。也可用50ml一次性注射器分次注射和抽吸（劑量為30ml～50ml），具有相同的沖排效果。另側子官沖胚時應先重新插入鋼芯和放氣，將其移入另側子官角后用同樣方法沖胚。沖胚結束后放氣，將采卵管移入子宮體后，在子宮體推注抗生素（如土霉素100萬IU 或宮乳康10ml～20ml），肌注氯前列烯醇（PGC）0.4mg，間隔12h 后再用0.4mg。
9 胚胎檢查
9.1 檢胚
采用漏斗法接收回收液，靜置10min，等胚胎下沉后移去上層液，可將最后留在斗中的回收液倒入玻璃皿中直接撿胚，撿到胚胎應及時移入含有10%～20%犢牛血清的D-PBSS培養液中；進行凈化處理，對回收的胚胎進行形態學鑒定確定等級。
從回收液中撿胚可用實體顯微鏡放大16倍～20倍。將找到的胚胎用吸管撿出放入裝有D-PBSS保存液的器皿中，按順序依次輕輕吸胚、清洗，可先吸些D-PBSS吹向胚的周圍，使胚在液滴中翻騰，清除卵周圍的黏連物，一般需清洗3次。
9.2 胚胎質量鑒定
9.2.1 將凈化后的胚胎置于D-PBSS液中，放大40倍～200倍作形態學檢查。胚齡通常以母畜發情日為0天來計算，距發情日的天數即為胚齡。
9.2.2 胚胎發育特征
適于移植的胚胎胚齡為6d～8d,相對應的胚胎發育階段為桑椹胚至囊胚，其發育表現為：
9.2.2.1 桑椹胚
受精后第5d～6d 回收的胚胎，能觀察到球狀細胞團，分不清分裂球，占據透明帶內腔的大部分。
9.2.2.2 致密桑椹胚
受精后第6d～7d 回收的胚胎，細胞團變小，占透明帶內腔的60%～70%。
9.2.2.3 早期囊胚
受精后第7d～8d 回收的胚胎，細胞的一部分出現發亮的胚泡腔，細胞團占透明帶內腔的70%～80%，難以分清內細胞團和滋養層。
9.2.2.4 囊胚
受精后第7d～8d 回收的胚胎，內細胞團和滋養層界限清晰，胚泡腔明顯，細胞充滿透明帶內腔。
9.2.2.5 擴張囊胚
受精后第8d～9d 回收的胚胎，胚泡腔明顯擴大，體積增至原來的1.2倍～1.5倍，與透明帶之間無空隙，透明帶變薄，相當于正常厚度的1/3。
9.2.2.6 孵育胚
透明帶破裂，細胞團孵出透明帶。
9.2.3 胚胎的分級
9.2.3.1 1級 優良胚胎：形態典型，卵細胞和分裂球的輪廓清晰，細胞質致密，色調和分布極均一。
9.2.3.2 2級 普通胚胎：與典型的胚胎相比，稍有變形，但卵細胞和分裂球的輪廓清晰，細胞質較致密，分布均勻，變性細胞和水泡不超過10%～30%。
9.2.3.3 3級 不良胚胎：形態有明顯變異，卵細胞和分裂球輪廓稍不清晰，或部分不清晰，細胞質不致密，分布不均勻，色調發暗，突出的細胞、水泡和變性細胞占30%～50%。
9.2.3.4 4級 凡總體形態結構不正常的卵子，未受精的、退化的或破碎的卵子，透明帶空的或將要空的卵子，以及與正常胚齡相比，發育遲2d或2d以上的胚胎均難以繼續正常發育，不宜移植。
10 胚胎的裝管、冷凍和解凍
10.1 裝管
10.1.1 采用一步平衡法，
冷凍保存液為含10%甘油的D-PBSS液。將胚胎在基礎液（PBS＋10%BSA 沖卵液）中洗滌5次～10次，在10%甘油第1液中平衡5min，在10%甘油第2液中平衡10min后裝管。
注：10％BSA 沖卵液：含10%胎牛血清的磷酸鹽緩沖液洗
10.1.2 胚胎裝管方法：
將平衡好的胚胎用0.25ml 細管裝管備用。3 段法裝管的順序是：3cm 12.5%蔗糖PBS液、0.5cm氣泡、1.0cm10%甘油PBS液（含胚胎）、0.5cm氣泡、2cm12.5%蔗糖PBS液。用封口塞、聚乙醇粉末封口或熱封法將開口端封口，按程序進行冷凍。
10.2 冷凍
將裝入胚胎的細管放入0℃冷凍儀平衡10min，以1℃/min速度降溫，（-7～-6）℃誘發結晶，平衡10min。隨后將冷凍儀以0.5℃/min (O.3～O.8℃/min)降至-30℃，然后將冷凍后的胚胎分裝標記放入液氮罐中長期保存。
10.3 解凍
從液氮罐中取出胚胎細管，在空中停留1s，放入36～38℃水浴中停留10s解凍后，用生理鹽水清洗，剪去棉塞端，與帶有空氣的1ml注射器連接上。再剪去細管的另一端封口，將胚胎推到干燥潔凈器皿內。采用分步法脫除甘油，分別間隔5min，依次通過1摩爾、0.75摩爾、0.50摩爾、0.25摩爾的甘油磷酸鹽緩沖液，最后通過含10%胎牛血清的磷酸鹽緩沖液洗2次～3次，去除甘油，移至不含甘油的PBS保存液中鏡檢待用。
10.4 胚胎細管標記
胚胎細管應標記和登記。存檔資料包括胚胎系譜、代碼、保存方法、應用單位。胚胎標記包括序列號、父本、母本、胚胎發育期和級別及數量、胚胎生產單位和胚胎生產日期。
11 胚胎移植
分為鮮胚移植和凍胚移植。
11.1 受體牛黃體檢查
要求受體牛發情時直腸檢查的卵泡直徑在10mm～20mm左右，發情后36h出現排卵。黃體發育達到一級和二級發育水平的才能進行胚胎移植。黃體發育程度判定條件如下：
11.1.1 一級黃體
黃體形態和發情天數一致，黃體呈乳頭狀突出于卵巢表面。黃體直徑2.0cm左右，約拇指大小，呈軟肉狀，排卵點火山口狀突起明顯。
11.1.2 二級黃體
黃體形態和發情天數基本一致。黃體直徑1.5cm 左右，約中指肚大小，呈硬肉狀，排卵點突起較明顯。
11.1.3 三級黃體
黃體直徑1.0cm 左右，手摸約小拇指大小，硬而突起不明顯。黃體發育不良的母牛應及時淘汰。
11.2 受體牛的準備
保定受體牛，清除便污，肌注2%靜松靈1ml或用2%的普魯卡因3ml在l～2尾椎間硬膜外麻醉。清洗外陰，用高錳酸鉀水沖洗消毒，用滅菌紙擦干，最后經酒精棉球消毒。
11.3 器械準備
先將移植槍、槍頭及金屬保護外套分別用紙包扎好，高壓消毒。塑料卡蘇式移植槍需經氣體滅菌。移植時先用70%酒精棉球消毒裝有胚胎的塑料吸管，然后剪掉封口一端，裝入移植槍內，套上保護外套。
11.4 移植前胚胎裝管
用0.25ml吸管分三段吸入PBS保存液，中間由兩個氣泡隔開，中段含有胚胎。也可用小汽泡分成多段裝管，胚胎在中段。一步吸管法解凍脫甘油后，用酒精棉球多次消毒吸管，剪去封口即可用于移植。
11.5 移植
操作員一只手伸進直腸，另一只手持移植器插入陰道，移植器到達子宮頸口時，用力將移植槍捅破外套填片，插入子宮頸。在直腸內誘導使槍頭輕輕穩妥地插入黃體一側子宮角至大彎處，持移植器的手推出胚胎，緩慢旋轉地抽出移植槍。
12 妊娠診斷
采用外部觀察法和直腸檢查法，執行DB1505/T 074。